V-1000 小动物呼吸机是玉研公司专为小鼠、大鼠以及其它小动物设计的易于使用的呼吸机。容量模式的每次呼吸时提供一个固定的潮气量，压力模式则使充气在预设的气道压力下停止。容量模式下, 呼吸机遵循时间流量原则,已知气流在一定时间内经过，从而得出相应的经过的体积。压力模式下,气流进行简单地调整，以提供一个合适的吸气时间。实际潮气量显示在液晶显示屏上，以及分钟通气量（MV）和其他呼吸参数都显示在屏幕上内置气泵可以无需额外气源进行操作。这个泵通过后面板的端口吸入室内空气、氧气或麻醉气体。

V-1000控制简单、数据直观。呼吸速率(RR)直接设置，显示为呼吸/分钟。吸呼比取决于吸气时间的设置。所有参数设置均可通过触屏操作，调整后，液晶显示屏会自动更新，显示新的流量和相应的潮气量。压力模式以及容量模式通过触屏操作进行切换。在任何模式下，前面板压力柱状表都会连续显示当前气道压力。这个压力信号也可以作为外部记录数据进行导出。 可以通过按下叹息功能进行设置自动叹息功能。

产品特点：

1. 控制准确、性能稳定、操作简便、经久耐用；
2. 超静音设计，减少实验噪声； 
3. 内置气泵，以空气作为气源, 无需高压气体，使用方便；
4. 可使用外置氧气或者麻醉气体作为气源，组成完整的呼吸麻醉系统；
5. 多种呼吸参数可调可控：呼吸频率，通气量、气道压力、吸气比例、压力触发阈值、叹息触发阈值等；
6. 压力控制模式：气道压力控制范围：0-50cmH2O；
7. 容量控制模式：潮气量调节范围 0-100ml，步进 0.1ml；
8. 带叹息呼吸功能，叹息周期可调范围：0-999；
9. 叹息功能具备叹息呼吸比单独调节功能；
10. 在呼吸机的工作过程中可随时改变工作参数；
11. 带医用级5寸IPS 液晶屏，分辨率：720*1280；
12. 能够显示各种通气参数，如：呼吸频率、潮气量、呼吸比、分钟通气量、叹息压力、气道压力；
13. 可实时显示气道压力波形图；
14. 带飞梭控制旋钮：方便术中进行参数调整；
15. 具有吸气灯、呼气灯、吸气维持 LED 灯，可显示瞬间的通气压力，方便实时监控呼吸机的运行状态； 
16. 配备特制的经口气管插管，实现无创伤呼吸插管，术后无需进行气管缝合手术； 
17. 具有 USB 数据接口，实现远程控制，配合成像系统进行触发设置； 

应用领域：

适用于大小鼠、豚鼠、家兔等小型实验动物，可用于基础医学、临床医学和动物医学等科学研究实验（如心肌缺血模型制作、肺功能评估）及动物临床⼿术中的呼吸管理、动物的急救、呼吸治疗等。

型号：V-1000

V-1000型小动物呼吸机的主要配置：

序号	主要配置	数量	单位
1	呼吸机主机	1	台
2	大鼠经口气管插管	1	包
3	小鼠经口气管插管	1	包
4	呼吸机管路	1	套
5	说明书	1	份
6	电源线	1	根

根据需求，还可以选择：SAR-1000型小动物呼吸机

· 带呼气末正压，确保肺部充盈并维持到呼气结束；

· 终末吸气暂停能改善动物肺部的气体交换和呼吸的效率；

· 在容量模式下，能够精确控制通气量；

· 在压力模式下，气流也可以被调整到合适的吸气时间；

· 在LCD液晶显示器上不仅能直观地显示实际计算的潮气量，还能显示每分钟呼吸次数和其它呼吸参数；

· 内置气泵独立运作，可切换通入空气、氧气或麻醉气体；

主要型号：

· SAR-1000，大鼠、小鼠通用型

· SAR-830AP，大鼠豚鼠型号

· CTP VA，兔子型号的扩展适配器

型号：SAR-830AP

型号：SAR-1000

兔子、猴子等10Kg以下动物的呼吸适配器

多通道呼吸适配器

主要特色与优势：

· 压力或容量循环操作；

· 潮气量和速率范围广；

· 人性化设计，操作简单方便；

· 标配用于小鼠、大鼠；

· 加配适配器可以做兔子、猴子等10Kg以下的动物；

· 直接在LCD液晶显示屏上显示潮气量和其它呼吸参数；

· 可以通过USB接口远程控制；

小鼠呼吸管路

大鼠呼吸管路

多种型号的呼吸机技术参数对照：

还可配合大小鼠喉镜、气管插管平台等工具，对大鼠、小鼠经口以无创的方式插入气管。

大鼠、小鼠喉镜

气管插管平台

   

CG-02M型，适合做小鼠，外尺寸：20*15*20cm 

CG-02R型，适合做大鼠，外尺寸：22*21*28cm

   

CG-04M型，小鼠专用款式

参考文献：

1. Sun, Zhenxing et al. “Myocardium-targeted transplantation of PHD2 shRNA-modified bone mesenchymal stem cells through ultrasound-targeted microbubble destruction protects the heart from acute myocardial infarction.” Theranostics vol. 10,11 4967-4982. 6 Apr. 2020, doi:10.7150/thno.43233

2. Zhang, Li et al. “Localized Delivery of shRNA against PHD2 Protects the Heart from Acute Myocardial Infarction through Ultrasound-Targeted Cationic Microbubble Destruction.” Theranostics vol. 7,1 51-66. 1 Jan. 2017, doi:10.7150/thno.16074

3. Cai, Heng et al. “Mild Hypothermia Promotes Ischemic Tolerance and Survival of Neural Stem Cell Grafts by Enhancing Global SUMOylation.” Oxidative medicine and cellular longevity vol. 2022 6503504. 27 May. 2022, doi:10.1155/2022/6503504

4. Zhang, Xuerui et al. “Dominant Negative FADD/MORT1 Inhibits the Development of Intestinal Intraepithelial Lymphocytes With a Marked Defect on CD8αα+TCRγδ+ T Cells.” Frontiers in immunology vol. 9 2038. 10 Sep. 2018, doi:10.3389/fimmu.2018.02038

5. Ma, HaiXiang et al. “Dorsal raphe nucleus to pre-Bötzinger complex serotonergic neural circuit is involved in seizure-induced respiratory arrest.” iScience vol. 25,10 105228. 27 Sep. 2022, doi:10.1016/j.isci.2022.105228

6. Ren, Wenbo et al. “Moderate hypothermia induces protein SUMOylation in bone marrow stromal cells and enhances their tolerance to hypoxia.” Molecular medicine reports vol. 16,5 (2017): 7006-7012. doi:10.3892/mmr.2017.7425

7. Zhang, X-G et al. “Investigating the expression of miRNA-133 in animal models of myocardial infarction and its effect on cardiac function.” European review for medical and pharmacological sciences vol. 23,13 (2019): 5934-5940. doi:10.26355/eurrev_201907_18338

8. Wang, Juntao et al. “Protective effects of dexmedetomidine on lung in rats with one-lung ventilation.” Experimental and therapeutic medicine vol. 17,1 (2019): 187-192. doi:10.3892/etm.2018.6952

9. Qing, Hua et al. “Regulation of adventitial interstitial fluid circulation by heartbeat and respiration.” bioRxiv doi:10.1101/2022.10.18.512678

10. 韩悦, 刁玉刚, 宋丹丹, 等. 无血预充大鼠体外循环心脏不停跳模型的改进[J]. 中国体外循环杂志, 2020.

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