小鼠脑立体定位仪是专门为小鼠准备的定位仪，是为敲除基因小鼠实验和转基因小鼠实验设计的。它是一款体积较小和比较经济的定位设备。

主要配置：包含3轴左手操作臂，小鼠嘴夹和齿杆，双面耳杆，和一个角夹探头支架。

小鼠专用型的脑立体定位仪采用了三大技术来牢固固定小鼠头部：

1、轻质的聚甲醛树脂耳棒，前端逐渐变细；

2、特殊设计的下颌夹持器；

3、非植入性橡胶头；

耳棒的高度可以独立调节，垂直方向的刻度采用了激光雕刻技术，能够非常新晰的读出耳棒的高度。

1. 可以同时定位新生鼠和小型啮齿类动物

2. 底座尺寸：25cmx25cm

3. 兼容气体麻醉机

4. 耳棒和牙棒的高度调整适合10-75g小鼠

5. Delrin®材料的耳棒，更适合于小鼠实验操作

6. 三维操作臂可以精确定位

7. 支持双操作臂工作模式

8. 可选数显模式

9. 可选全自动模式

10. 精确度标准型100um，数显型10um，全自动型1um

根据需求不同，有多种不同的型号可供选择：单臂型，双臂型，数显型，数控型，超精密敬请来电咨询。

分辨率：100微米，10微米可选

ITEM	DESCRIPTION
51730	小鼠脑立体定位仪
51730D	数显型小鼠脑立体定位仪
51733	双臂小鼠脑立体定位仪
51733D	数显双臂小鼠脑立体定位仪
51730M	电动小鼠脑立体定位仪
51731	小鼠脑立体定位仪，基座

型号：51730

标准型小鼠脑定位仪

型号：51730D

51730D为数显型小鼠定位仪，三轴数字显示，精度0.01mm

型号：51730U

51730U为超精密小鼠脑立体定位仪，精度0.01mm

型号：51730M

51730M为电动型小鼠脑立体定位仪，可设置位移距离，进行电动控制

型号：51733

双臂型小鼠定位仪

三种双臂定位仪款式可选:

51733D型， 双臂数显小鼠脑立体定位仪，精度0.01mm

51733U型，超精密双臂小鼠脑立体定位仪，精度0.01mm

51733UD，超精密双臂数显小鼠脑立体定位仪，精度0.01mm

型号：51731  小鼠脑定位仪基座，用于小鼠脑部固定

动物保温毯

用于在整个手术过程中维持动物体温；

在立体定向手术过程中，将电热垫嵌入立体定向基板内，避免交叉污染，便于清理；

可以作为一个通用的动物保温毯使用，还可以选配 大小鼠肛温探头，用于动物手术中的保温毯的温度反馈和调节；

型号：53800

主要参数：

加热垫材质：硅橡胶

温度控制范围25-45℃

温度分辨率0.1⁰C

加热器功率：24VDC@3A上限值

电源要求120/240VAC（可切换），50/60Hz，75VA

温度探头尺寸：头端直径1.6mm

控制器尺寸：12.7x9.6x3.8cm

控制器重量：181g

小鼠加热毯尺寸：7 x 7cm

大鼠加热毯尺寸：15.25 x 15.25cm

笼式加热毯尺寸：16 x 38cm

型号：53850型 

双通道动物保温毯

多种尺寸的保温垫可供选择：

小鼠加热毯尺寸：7 x 7cm

大鼠加热毯尺寸：15.25 x 15.25cm

增大号加热毯尺寸：16 x 38cm

50304，大鼠、小鼠肛温探头

温度探头尺寸：头端直径1.6mm

型号：51649-1，橡胶型小鼠耳杆

小鼠脑立体定位仪的无损伤橡胶耳杆和锯齿状口

脑立体定位仪相关配件及可选配件：

大鼠门牙固定适配器	小鼠固定适配器
电极夹持器	电极、螺帽、注射器夹持器
电极、注射器夹持器	微量注射器
微量注射泵	颅骨钻

小动物脑立体定位仪部分参考文献：
1. Albéri, L., Lintas, A., Kretz, R., Schwaller, B., & Villa, A. E. (2013). The calcium-binding protein parvalbumin modulates the firing 1 properties of the reticular thalamic nucleus bursting neurons. Journal of neurophysiology, 109(11), 2827-2841.
2. Sonati, T., Reimann, R. R., Falsig, J., Baral, P. K., O’Connor, T., Hornemann, S., Aguzzi, A. (2013). The toxicity of antiprion antibodies is mediated by the flexible tail of the prion protein. Nature, 501(7465), 102-106.
3. Ali, I., O’Brien, P., Kumar, G., Zheng, T., Jones, N. C., Pinault, D., O’Brien, T. J. (2013). Enduring Effects of Early Life Stress on Firing Patterns of Hippocampal and Thalamocortical Neurons in Rats: Implications for Limbic Epilepsy. PLOS ONE, 8(6), e66962.
4. Bell, L. A., Bell, K. A., & McQuiston, A. R. (2013). Synaptic Muscarinic Response Types in Hippocampal CA1 Interneurons Depend on Different Levels of Presynaptic Activity and Different Muscarinic Receptor Subtypes. Neuropharmacology.
5. Bolzoni, F., Bączyk, M., & Jankowska, E. (2013). Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat. The Journal of Physiology.
6. Bolzoni, F., Bączyk, M., & Jankowska, E. (2013). Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat. The Journal of Physiology.
7. Babaei, P., Tehrani, B. S., & Alizadeh, A. (2013). Effect of BDNF and adipose derived stem cells transplantation on cognitive deficit in Alzheimer model of rats. Journal of Behavioral and Brain Science, 3, 156-161.
8. Gilmartin, M. R., Miyawaki, H., Helmstetter, F. J., & Diba, K. (2013). Prefrontal Activity Links Nonoverlapping Events in Memory. The Journal of Neuroscience, 33(26), 10910-10914.
9. Feng, L., Sametsky, E. A., Gusev, A. G., & Uteshev, V. V. (2012). Responsiveness to nicotine of neurons of the caudal nucleus of the solitary tract correlates with the neuronal projection target. Journal of Neurophysiology, 108(7), 1884-1894.
10. Clarner, T., Diederichs, F., Berger, K., Denecke, B., Gan, L., Van der Valk, P., Kipp, M. (2012). Myelin debris regulates inflammatory responses in an experimental demyelination animal model and multiple sclerosis lesions. Glia, 60(10), 1468-1480.
11. Girardet, C., Bonnet, M. S., Jdir, R., Sadoud, M., Thirion, S., Tardivel, C., Troadec, J. D. (2011). Central inflammation and sickness-like behavior induced by the food contaminant deoxynivalenol: A PGE2-independent mechanism.Toxicological Sciences, 124(1), 179-191.
12. Hruška-Plocháň, M., Juhas, S., Juhasova, J., Galik, J., Miyanohara, A., Marsala, M., Motlik, J. (2010). A27 Expression of the human mutant huntingtin in minipig striatum induced formation of EM48+ inclusions in the neuronal nuclei, cytoplasm and processes. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A9.
13. Brooks, S., Jones, L., & Dunnett, S. B. (2010). A29 Frontostriatal pathology in the (C57BL/6J) YAC128 mouse uncovered by the operant delayed alternation task. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A10.
14. Yu, L., Metzger, S., Clemens, L. E., Ehrismann, J., Ott, T., Gu, X., Nguyen, H. P. (2010). A28 Accumulation and aggregation of human mutant huntingtin and neuron atrophy in BAC-HD transgenic rat. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A9.
15. Baxa, M., Juhas, S., Pavlok, A., Vodicka, P., Juhasova, J., Hruška-Plocháň, M., Motlik, J. (2010). A26 Transgenic miniature pig as an animal model for Huntington’s disease. Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A8-A9.

    您想了解更多详细资料吗？

    请与我们联系：

    TEL：021-35183767，021-54377179

         18502129044

    QQ：3007536034

    微信：yuyanbio

    Mail：yuyanbio@126.com

    欢迎您的咨询！