eSpiraTM FMS 用力肺功能检测系统是检测动物通气肺功能相关的全部生理数据的大型系统，可提供与人类肺功能指标一致的各种生理指标参数，广泛应用于慢阻肺、肺气肿、肺纤维化、矽肺、急性肺损伤、机械通气型肺损伤等各种急慢性呼吸系统疾病的临床前研究。

主要测试模式：

FMS可对麻醉动物进行一系列成组实验，自动检测并实时数据分析，获得相应肺功能生理参数。

性能及优势：

· FMS系统是COPD、急性肺损伤、肺间质疾病等研究的必备工具，广泛适用于多种肺部疾病模型临床前研究；
· 经典的肺量测定法（Spirometry）检测FRC功能残气量、FEV、FVC用力肺活量、准静态肺顺应性、TLC肺总量、IC吸气能力、MMEF平均呼气中期流量等直接生理数据，与人类医学肺功能检测的各种肺功能指标基本一致，是目前检测指标最完整的动物肺功能检测系统；
· 适用于多种实验动物，内置金属正负压力储能器可适应更大压力范围，检测更大动物无需更换主机；
· FRC、F-V、P-V多个测试组合可在五分钟内完成并输出丰富的指标数据；
· 可持续输出气道阻力Rl、动态肺顺应性Cdyn、潮气量等平静呼吸功能数据；
· 检测跨肺压（胸腔内压）从而得到更精确的数据结果，排除呼吸机等的外部因素影响；
· 检测中允许使用呼吸机和不使用呼吸机两种方式，标配为不使用呼吸机，以得到更真实的潮气量和呼吸频率等数据结果；
· 主机内置小型计算机处理原始数据，数据采样率高达60kHz；
· 数据立即呈现，无须等待；多种图形及统计分析数据可供导出；
· 数据传输和指令传达采用不同串口连线，避免了大量数据双向传输引起缓冲池溢出故障；
· 可外接氧气、CO、CO2、氮气以及其它各种气体以满足多种实验方案；
· 符合GLP及FDA Final Rule 21 CFR Part 11相关标准。

检测参数：

RC测试	呼吸频率、潮气量、分钟通气量、气道阻力、动态肺顺应性、压力变化、吸气流速峰值、呼气流速峰值、呼吸时间、分钟通气量等
F-V测试	用力呼气容积FEVx、用力肺活量FVC、呼气峰值流速PEF、呼气中值流速MMEF、用 力呼气流速FEFx、FEV/PEF等
RRC测试	功能残气量FRC、残气量RC、压力差DeltaP、容积差DeltaV、死腔DeadSp等
P-V测试	吸气量IC、肺活量VC、肺总量TLC、准静态顺应性（Cmax、Cchord、Cfvc50、C_P0）等

应用领域：

上图为利用eSpira™系统在慢性哮喘小鼠模型上获取的数据。小鼠通过卵清蛋白(OVA)激发致敏，对照组只注射明矾和缓冲液。在最后一次激发24小时后进行肺功能检测。 如图，FVC降低了49%，FEV50降低了46%。数据表明eSpira™系统用于小鼠哮喘模型，可以有效的检测肺功能的改变。

通过 ePacq（EMMS Post Acquisition）分析软件应用程序为数据审查和呈现提供了完整的解决方案。ePacq 使研究人员可以即时访问使用 EMMS eDacq 记录的数据，以表格和图形格式显示数据。

ePacq 显示分析的原始数据

ePacq 可用于将大型数据集压缩成更易于管理的东西。这种数据压缩的传统技术将涉及编写冗长的 Excel 表格。这种方法既费时又容易出错。ePacq 通过提供快速简便的实验数据总结消除了这些问题。

· 特定时间段内的个体受试者数据

· 治疗组统计，包括平均值、最大值、最小值、标准差、SEM

· 研究统计数据，所有治疗组的平均数据。

ePacq 显示分析的协议数据

如需无创方式检测小动物的肺功能参数，可选择：

全身体积描记系统

如需检测小动物的气道阻力，可选择：

小动物气道阻力和肺顺应性检测系统

参考文献：

1.Yoon, S., et al., Comparative study of lung toxicity of E-cigarette ingredients to investigate E-cigarette or vaping product associated lung injury. Journal of Hazardous Materials, 2023. 445: p. 130454. 
2.Wang, J., et al., Macrophage-derived GPNMB trapped by fibrotic extracellular matrix promotes pulmonary fibrosis. Communications Biology, 2023. 6(1): p. 136. 
3.Han, L., et al., Tracking the response to Pseudomonas aeruginosa infection in ozone-induced chronic obstructive pulmonary disease mouse models. Biomedicine & Pharmacotherapy, 2022. 150: p. 112980. 
4.Zhang, Y., et al., Adipose-derived mesenchymal stem cells suppress ozone-mediated airway inflammation in a mouse model of chronic obstructive pulmonary disease. Molecular Immunology, 2022. 151: p. 95-102. 
5.Yu, J., et al., Astragaloside trigger autophagy: Implication a potential therapeutic strategy for pulmonary fibrosis. Biomedicine & Pharmacotherapy, 2022. 154: p. 113603. 
6.Wang, M., et al., Blockade of phosphotyrosine pathways suggesting SH2 superbinder as a novel therapy for pulmonary fibrosis. Theranostics, 2022. 12(10): p. 4513. 
7.Kim, H., et al., Comprehensive Targeted Metabolomic Study in the Lung, Plasma, and Urine of PPE/LPS-Induced COPD Mice Model. International Journal of Molecular Sciences, 2022. 23(5): p. 2748. 
8.Chen, D., et al., Fine particulate matter and lung function among burning-exposed deepwater horizon oil spill workers. Environmental Health Perspectives, 2022. 130(2): p. 027001. 
9.Li, Q., et al., Inhibition of ROCK ameliorates pulmonary fibrosis by suppressing M2 macrophage polarisation through phosphorylation of STAT3. Clinical and Translational Medicine, 2022. 12(10): p. e1036.
10.Capristán Morales, A.E., Hernia hiatal asociado a infección por Helicobacter Pylori en un Hospital de primer nivel de atención. 2022.

    您想了解更多详细资料吗？

    请与我们联系：

    TEL：021-35183767，021-54377179

         18502129044

    QQ：3007536624

    微信：yuyanbio

    Mail：yuyanbio@126.com

    欢迎您的咨询！